測定意義：

GSH是細胞內(nèi)最主要的抗氧化巰基物質(zhì)，在抗氧化、蛋白質(zhì)巰基保護和氨基酸跨膜運輸?shù)戎芯哂兄匾饔谩＿€原型與氧化型比值（GSH/GSSG）是細胞氧化還原狀態(tài)的主要動態(tài)指標。因此，測定細胞內(nèi)GSH和GSSG含量以及GSH/GSSG比值，能夠很好地反映細胞所處的氧化還原狀態(tài)。

測定原理：

DTNB與GSH反應(yīng)生成復合物，在412nm處有特征吸收峰；其吸光度與GSH含量成正比。

組成：

自備儀器和用品：

可見分光光度計、低溫離心機、水浴鍋、可調(diào)節(jié)移液器、1ml玻璃比色皿和蒸餾水。

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1. 組織：按照組織質(zhì)量（g）：試劑一體積(ml)為1：5~10的比例（建議稱取約0.1g組織，加入1ml試劑一）進行冰浴勻漿。8000g，4℃離心10min，取上清置冰上待測。

2. 細菌、真菌：按照細胞數(shù)量（10⁴個）：試劑一體積（ml）為500~1000：1的比例（建議500萬細胞加入1ml試劑一），冰浴超聲波破碎細胞（功率300w，超聲3秒，間隔7秒，總時間3min）；然后8000g，4℃，離心10min，取上清置于冰上待測。

3. 血清等液體：直接測定。

GSH測定操作：

1. 分光光度計預熱30min，調(diào)節(jié)波長到412 nm，蒸餾水調(diào)零。

2. 試劑二置于25℃（一般物種）或者37℃（哺乳動物）水浴中保溫30min。

3. 空白管：取1ml玻璃比色皿，依次加入100μl蒸餾水，700μl試劑二，200μl試劑三，混勻靜置2min后測定412 nm吸光度A1。

4. 測定管：取1ml玻璃比色皿，依次加入100μl上清液，700μl試劑二，200μl試劑三，混勻靜置2min后測定412 nm吸光度A2。

注意：空白管只需要測定一次。

GSH含量計算公式：

GSH標準曲線公式：y=1.5 x（x為GSH濃度，μ mol /ml；y為吸光值）

GSH計算：

（1）按蛋白濃度計算

GSH（μ mol/ mg prot）=(A2－A1) ÷1.5×V樣÷（V樣×Cpr ）=0.667×(A2－A1) ÷Cpr

（2）按樣本鮮重計算

GSH（μ mol/g鮮重）=(A2－A1) ÷1.5×V樣÷(V樣÷V樣總×W)=0.667×(A2－A1) ÷W

（3）按細胞數(shù)量計算

GSH（μ mol /10⁴ cell）=(A2－A1) ÷1.5×V樣÷(V樣÷V樣總×細胞數(shù)量)=0.667×(A2－A1) ÷細胞數(shù)量

（4）按液體體積計算

GSH（μ mol/ ml）=(A2－A1) ÷1.5×V樣÷V樣 =0.667×(A2－A1)

V樣總：上清液總體積，1 ml；V樣：加入反應(yīng)體系中上清液體積，100μl=0.1 ml；W：樣品質(zhì)量，g ；Cpr：上清液蛋白質(zhì)濃度，mg/ml；

注意事項：

1. 試劑一中含有蛋白質(zhì)沉淀劑，因此上清液不能用于蛋白濃度測定。

2. 最低檢出限為0.01mmol/L。